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ChIP-seq

ChIP-seq技術(shù)介紹
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技術(shù)簡介:
     
染色質(zhì)免疫共沉淀技術(shù)(Chromatin Immunoprecipitation,ChIP),是研究體內(nèi)蛋白質(zhì)與DNA相互作用的有力方法,通常用于轉(zhuǎn)錄因子結(jié)合位點(diǎn)或組蛋白特異修飾位點(diǎn)的研究。將ChIP與第二代測序技術(shù)相結(jié)合的ChIP-Seq技術(shù),能夠高效地在全基因組范圍內(nèi)檢測與組蛋白、轉(zhuǎn)錄因子等互作的DNA區(qū)段。
         ChIP-seq的原理是首先通過染色質(zhì)免疫共沉淀技術(shù)(ChIP)特異性地富集目的蛋白結(jié)合的DNA片段,并對(duì)其進(jìn)行純化與文庫構(gòu)建;然后對(duì)富集得到的DNA片段進(jìn)行高通量測序。研究人員通過將獲得的數(shù)百萬條序列標(biāo)簽精確定位到基因組上,從而獲得全基因組范圍內(nèi)與組蛋白、轉(zhuǎn)錄因子等互作的DNA區(qū)段信息。


應(yīng)用領(lǐng)域:
  •        •  反式因子在基因組上結(jié)合位點(diǎn)的精確定位
  •         •  組蛋白共價(jià)修飾與基因表達(dá)的關(guān)系

技術(shù)優(yōu)勢:
  •         •  全基因組覆蓋:ChIP-Seq可在全基因組范圍單堿基水平對(duì)蛋白結(jié)合位點(diǎn)進(jìn) 行篩選與鑒定。
  •         •  高靈敏度:每個(gè)樣本可獲得數(shù)百萬條的序列標(biāo)簽,可發(fā)現(xiàn)研究基因組上稀有的蛋白結(jié)合位點(diǎn)。
  •         •  高精確率:可獲得高水平的信噪比數(shù)據(jù),準(zhǔn)確區(qū)分真實(shí)事件與噪音,精確定位蛋白結(jié)合位點(diǎn)。
  •          高性價(jià)比:僅需較少的數(shù)據(jù)量即可鑒定全基因組范圍內(nèi)的結(jié)合位點(diǎn)。
技術(shù)參數(shù)與實(shí)驗(yàn)流程
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技術(shù)參數(shù)
樣本要求 測序策略 數(shù)據(jù)要求
  • 樣品類型:ChIP富集好的DNA樣品;
  • 組織類型:不限 ;
  • 物種信息:不限 (有基因組參考序列) ;
  • 抗體類型:不限(需提供ChIP陽性位點(diǎn)或所用抗體的信息,用于樣品質(zhì)檢和測序數(shù)據(jù)分析。)
  • 樣本保存和運(yùn)輸要求:-20°C保存,冰袋運(yùn)輸;
  • 樣品總量:單次實(shí)驗(yàn)≥200 ng,請(qǐng)盡可能提供兩次以上的用量;
  • 樣品濃度:≥10 ng/µL;
  • 樣品純度:OD260/OD280 = 1.8-2.2;
  • DNA片段大?。悍植荚?00-500 bp,主峰分布在200-300 bp;
  • 建議提供ChIP獲得DNA設(shè)計(jì)引物進(jìn)行qPCR定量的檢測報(bào)告,附陽性和陰性對(duì)照的結(jié)果。
Hiseq 2*150
  • 常規(guī)深度:6G clean data;高深度:10G clean data

 

實(shí)驗(yàn)流程

A.    ChIP-seq建庫測序流程


B.     數(shù)據(jù)分析流程

經(jīng)典文章解讀
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案例:利用ChIP-seq鑒定番茄轉(zhuǎn)錄因子ASR1結(jié)合位點(diǎn)


背景:
  •          確定轉(zhuǎn)錄因子的靶基因?qū)τ诮议_所有類型生物的調(diào)控網(wǎng)絡(luò)是特別重要的。Asr1,這個(gè)轉(zhuǎn)錄因子是植物獨(dú)有的,并且廣泛共知它在減輕因?yàn)樗娜狈Χ鸬母珊得{迫方面是起著非常重要的作用。盡管Asr1已經(jīng)被克隆出20多年,但是其靶基因仍然是不清楚的。

方法:
  •          研究人員采集干旱脅迫處理過的番茄葉片(WT),利用Anti-ASR1 抗體進(jìn)行 ChIP-seq;比對(duì)參考基因組,peak calling ;qPCR驗(yàn)證 轉(zhuǎn)錄因子識(shí)別位點(diǎn)是否準(zhǔn)確 ;然后對(duì)Peak關(guān)聯(lián)基因在基因組上的位置進(jìn)行分析; 對(duì)Peak關(guān)聯(lián)基因進(jìn)行GO分析;并進(jìn)行ASR1-binding motif預(yù)測。

結(jié)果:
  •         •  通過ASR1抗體富集到5個(gè)顯著的peak區(qū)域(3–830, 9–950, 10–800, 10–810 and 10–820) 。
  •         •  用qPCR驗(yàn)證了轉(zhuǎn)錄因子識(shí)別位點(diǎn)是準(zhǔn)確的,并使用ST-3作為負(fù)對(duì)照。
  •         •  ASR1結(jié)合區(qū)域在基因組上的分布發(fā)現(xiàn)42%的結(jié)合區(qū)域位于上游調(diào)控區(qū),45%位于編碼區(qū)和內(nèi)含子區(qū),而13%位于下游區(qū)域。
  •         •  對(duì)ASR1富集的靶基因進(jìn)行細(xì)胞功能分類,發(fā)現(xiàn)ASR1富集的靶基因參與編碼細(xì)胞壁的合成和重建以及一些水通道蛋白 。
  •         •  確定了一個(gè)ASR1-binding DNA motif。
  •         •  在Asr1-silenced轉(zhuǎn)基因植物中檢測ASR1作用位點(diǎn)(3-200,10-820)的表達(dá),結(jié)果發(fā)現(xiàn)當(dāng)ASR1被RNAi后,其靶基因的表達(dá)顯著降低,表明靶基因直接受ASR1調(diào)控 。

參考文獻(xiàn)
Ricardi MM., et al., Genome-wide data (ChIP-seq) enabled identification of cell wall-related and aquaporin genes as targets of tomato ASR1, a drought stress-responsive transcription factor. BMC Plant Biology, 2014 Jan 14;14:29.
 

 

 
圖一:通過ASR1抗體富集到的peak區(qū)域,并用qPCR驗(yàn)證轉(zhuǎn)錄因子識(shí)別位點(diǎn)是否準(zhǔn)確

圖二:ASR1結(jié)合的基因組區(qū)域分析

圖三:確定了一個(gè)ASR1-binding DNA motif

圖四:靶基因的表達(dá)直接受ASR1調(diào)控

 
 

     
     
  
 
 
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