癌癥在機(jī)體擴(kuò)散后尋找并且破壞循環(huán)在機(jī)體中的癌細(xì)胞對(duì)于癌癥患者的生存至關(guān)重要，近日，刊登在國(guó)際雜志Chemistry & Biology上的一篇研究報(bào)告中，來自美國(guó)阿肯色大學(xué)的研究人員開發(fā)了一種新型技術(shù)，其可以幫助研究者標(biāo)記循環(huán)在血液中的腫瘤細(xì)胞并且對(duì)其進(jìn)行追蹤，這將大大幫助研究者們理解癌癥的擴(kuò)散機(jī)制以及如何有效抑制癌細(xì)胞的擴(kuò)散。        
癌細(xì)胞擴(kuò)散或者癌癥轉(zhuǎn)移是引發(fā)90%以上癌癥患者死亡的主要原因，當(dāng)前科學(xué)家并沒有有效的手段來干預(yù)及阻斷腫瘤細(xì)胞的擴(kuò)散，如今研究者開發(fā)了可對(duì)癌細(xì)胞進(jìn)行標(biāo)記且對(duì)其進(jìn)行追蹤的新技術(shù)。
       研究者利用圖片切換式的熒光蛋白作為基礎(chǔ)，其可以對(duì)光產(chǎn)生反應(yīng)來不斷改變顏色，當(dāng)?shù)谝皇ぐl(fā)光擊中循環(huán)中的腫瘤細(xì)胞后，熒光蛋白就會(huì)表現(xiàn)出熒光綠，使用不同波長(zhǎng)的第二束激發(fā)光將會(huì)使得腫瘤細(xì)胞變?yōu)闊晒饧t，對(duì)于標(biāo)記的單一細(xì)胞來講，研究者可以利用非常細(xì)的紫色激光對(duì)較細(xì)血管中的腫瘤細(xì)胞進(jìn)行標(biāo)記追蹤。        
來自每一個(gè)細(xì)胞的熒光最終都會(huì)被收集、檢測(cè)，并且作為實(shí)時(shí)的信號(hào)追蹤在電腦監(jiān)控器上重現(xiàn)，這就使得研究者們可以對(duì)血液中的單一腫瘤細(xì)胞進(jìn)行計(jì)數(shù)并且追蹤。
      Galanzha博士表示，這種技術(shù)就可以實(shí)現(xiàn)對(duì)血液中數(shù)億萬個(gè)細(xì)胞中的一個(gè)循環(huán)的病變細(xì)胞進(jìn)行標(biāo)記。隨后研究者利用腫瘤模式小鼠進(jìn)行實(shí)驗(yàn)，實(shí)時(shí)監(jiān)測(cè)小鼠機(jī)體中來自于原始腫瘤在血液中循環(huán)的癌細(xì)胞的動(dòng)態(tài)學(xué)情況，研究者也可以對(duì)單一循環(huán)的癌細(xì)胞多種目的地進(jìn)行成像，來揭示其循環(huán)的路徑、定居的健康組織以及存在的轉(zhuǎn)移位點(diǎn)等。
      這種新型技術(shù)將版主腫瘤學(xué)家開發(fā)出干預(yù)阻斷癌細(xì)胞在血液中循環(huán)的新型療法，從而為開發(fā)抑制腫瘤轉(zhuǎn)移及治療轉(zhuǎn)移性癌癥的療法提供幫助和希望。（來源：生物谷Bioon.com）

doi:10.1016/j.chembiol.2014.03.012
In Vivo Photoswitchable Flow Cytometry for Direct Tracking of Single Circulating Tumor Cells
Dmitry A. Nedosekin,Vladislav V. Verkhusha,Alexander V. Melerzanov,Vladimir P. Zharov,Ekaterina I. Galanzha
Photoswitchable fluorescent proteins (PSFPs) that change their color in response to light have led to breakthroughs in studying static cells. However, using PSFPs to study cells in dynamic conditions is challenging. Here we introduce a method for in vivo ultrafast photoswitching of PSFPs that provides labeling and tracking of single circulating cells. Using in vivo multicolor flow cytometry, this method demonstrated the capability for studying recirculation, migration, and distribution of circulating tumor cells (CTCs) during metastasis progression. In tumor-bearing mice, it enabled monitoring of real-time dynamics of CTCs released from primary tumor, identifying dormant cells, and imaging of CTCs colonizing a primary tumor (self-seeding) or existing metastasis (reseeding). Integration of genetically encoded PSFPs, fast photoswitching, flow cytometry, and imaging makes in vivo single cell analysis in the circulation feasible to provide insights into the behavior of CTCs and potentially immune-related and bacterial cells in circulation.